Правила взятия мазка

Эмпирическая антибактериальная монотерапия в настоящее время рассматривается как стандартное лечение при нейтропенической лихорадке у пациентов с онкопатологией, однако данный подход в ряде случаев может быть неадекватным из-за увеличения распространенности инфекций, вызванных полирезистентными штаммами микроорганизмов.

Опросы и голосования

Что по Вашему мнению является основной причиной развития рака шейки матки?

Правила забора материала для исследования методом полимеразной цепной реакции в режиме реального времени

1. Материал забирается утром до умывания с внутренней поверхности нижнего века движением от наружного к внутреннему углу глазной щели.
2. Необходимо следить, чтобы при моргании ресницы не касались тампона (придерживать веки руками).
3. При скудном отделяемом тампон предварительно смачивают стерильным физиологическим раствором или стерильной дистиллированной водой. Избыток влаги отжимают о внутреннюю поверхность ёмкости.

Особенности взятия мазков из носоглотки

1. Для взятия материала предпочтительно использовать транспортную среду и тампон на алюминиевом аппликаторе, т.к. его можно изогнуть под углом 120 0 , что необходимо для достижения области носоглотки. Вскрыть упаковку с тампоном со стороны держателя, аппликатор изогнуть, не вынимая его из стерильной упаковки. Руками к аппликатору не прикасаться, брать только за держатель.
2. Пациента усадить на стул против источника света. Зонд с ватным тампоном ввести лёгким движением по наружной стенке носа на глубину 2-3 см до нижней раковины. Затем зонд слегка опустить книзу, ввести в нижний носовой ход под нижнюю носовую раковину, сделать вращательное движение и удалить вдоль наружной стенки носа.
3. После забора материала тампон поместить в стерильную одноразовую пробирку с 500 мкл транспортной среды. Конец зонда отломить или отрезать, с расчётом, чтобы он позволил плотно закрыть крышку пробирки. Пробирку с раствором и рабочей частью зонда закрыть и промаркировать.
4. Допускается хранение материала до проведения исследования в течение суток при температуре 2-8 0 С . Допускается однократное замораживание — оттаивание материала.

Особенности взятия мазков из ротоглотки

1. Для взятия материала предпочтительно использовать транспортную среду и тампоном на алюминиевом аппликаторе, т.к. его можно изогнуть под углом 120 0 , что необходимо для достижения области ротоглотки. Вскрыть упаковку с тампоном со стороны держателя, аппликатор изогнуть, не вынимая его из стерильной упаковки. Руками к аппликатору не прикасаться, брать только за держатель. Пациента усадить на стул против источника света.
2. Мазки из ротоглотки берут сухим зондом вращательными движениями с поверхности миндалин, нёбных дужек и задней стенки ротоглотки после предварительного полоскания полости рта водой.
3. После забора материала тампон поместить в стерильную одноразовую пробирку с 500 мкл транспортной среды. Конец зонда отломить или отрезать, с расчётом, чтобы он позволил плотно закрыть крышку пробирки. Пробирку с раствором и рабочей частью зонда закрыть и промаркировать.
4. ВНИМАНИЕ! Рекомендуется совмещать мазки из носоглотки и ротоглотки в одной пробирке. Для этого рабочие концы зондов после взятия мазков у пациента помещаются в одну пробирку с 500 мкл транспортной среды и исследуются как один образец.
5. Допускается хранение материала до проведения исследования в течение суток при температуре 2-8 0 С . Допускается однократное замораживание — оттаивание материала.

Особенности взятия мокроты

1. Исследованию подлежит утренняя мокрота, выделяющаяся во время приступа кашля.
2. Перед откашливанием необходимо почистить зубы и прополоскать рот кипяченой водой с целью механического удаления остатков пищи, слущенного эпителия и микрофлоры ротовой полости. Следите за тем, чтобы в контейнер не попала слюна и носоглоточная слизь (особенно при насморке!).
3. Выделившуюся мокроту собирают в стерильный контейнер с красной крышкой. Крышку плотно закрывают, чтобы материал не вытек и маркируют. Если мокрота отделяется плохо, накануне пациенту дают отхаркивающие средства.
4. Допускается хранение материала до проведения исследования в течение суток при температуре 2-8 0 С .

Особенности взятия материала из уретры

1. Перед взятием материала пациенту рекомендуется воздержаться от мочеиспускания в течение 1,5-2 часов.
2. Непосредственно перед взятием материала наружное отверстие уретры необходимо обработать тампоном, смоченным стерильным физиологическим раствором. При наличии гнойных выделенийсоскоб рекомендуется брать через 15-20 мин после мочеиспускания, при отсутствии выделений необходимо провести массаж уретры с помощью зонда для взятия материала.
3. У женщин перед введением зонда в уретру проводится ее массаж о лобковое сочленение. В уретру у женщин зонд вводится на глубину 1,0-1,5 см, у мужчин – на 3-4 см и затем делается несколько вращательных движений, у детей материал для исследования берут только с наружного отверстия уретры.
4. После взятия материала зонд опускается в пробирку с транспортной средой и несколько раз вращается, а затем удаляется из пробирки. Пробирка плотно закрывается и маркируется.
5. Если время транспортировки биологического материала с момента взятия до момента его доставки в лабораторию более 2-х часов, то пробирку необходимо хранить при +4 0 С . Транспортировка биологического материала должна производиться только в сумке-холодильнике. В замороженном виде биологический материал может храниться не более 2-х недель.

Особенности взятия мазка из влагалища

1. Материал должен быть взят до проведения мануального исследования. Зеркало перед манипуляцией можно смочить горячей водой, применение антисептиков для обработки зеркала противопоказано.
2. Влагалищное отделяемое собирают стерильным одноразовым зондом из заднего нижнего свода или с патологически измененных участков слизистой и помещают в пробирку с транспортной средой. У девочек взятие материала производят со слизистой оболочки преддверия влагалища, а в отдельных случаях – из заднего свода влагалища через гименальные кольца. После внесения зонда в транспортную среду он несколько раз вращается, а затем удаляется из пробирки. Пробирка закрывается и маркируется.
3. Если время транспортировки биологического материала с момента взятия до момента его доставки в лабораторию более 2-х часов, то пробирку необходимо хранить при +4 0 С . Транспортировка биологического материала должна производиться только в сумке-холодильнике. В замороженном виде биологический материал может храниться не более 2-х недель.

Особенности взятия материала из цервикального канала

1. Перед взятием материала необходимо удалить ватным тампоном слизь и затем обработать шейку матки стерильным физиологическим раствором. Зонд вводится в цервикальный канал на глубину 0,5-1,5 см.
2. При наличии эрозийцервикального канала необходимо их обработать стерильным физиологическим раствором, и материал следует брать на границе здоровой и измененной ткани. При извлечении зонда необходимо полностью исключить его касание со стенками влагалища.
3. После взятия материала зонд опускается в пробирку с транспортной средой. После внесения зонда в транспортную среду он несколько раз вращается, а затем удаляется из пробирки. Пробирка закрывается и маркируется.
4. Если время транспортировки биологического материала с момента взятия до момента его доставки в лабораторию более 2-х часов, то пробирку необходимо хранить при +4 0 С . Транспортировка биологического материала должна производиться только в сумке-холодильнике. В замороженном виде биологический материал может храниться не более 2-х недель.

Особенности взятия секрета предстательной железы

1. Перед взятием секрета простаты головка полового члена обрабатывается стерильным ватным тампоном, смоченным физиологическим раствором.
2. Секрет простаты берется после предварительного массажа простаты через прямую кишку. Врач проводит массаж с надавливанием несколькими энергичными движениями от основания к верхушке. Затем из кавернозной части выдавливается простатический секрет.
3. Образец помещается в одноразовую сухую пластиковую пробирку с плотно закрывающейся или завинчивающейся крышкой и передается в лабораторию.
4. Транспортировка биологического материала должна производиться только в сумке-холодильнике.

Правила сбора мочи для мужчин

1. Вымойте руки с мылом.
2. Отведите назад крайнюю плоть (если она не обрезана), головку полового члена вымойте с мылом теплой кипяченой водой, просушите с помощью чистой салфетки.
3. Подготовьте контейнер, приоткрыв крышку контейнера так, чтобы ее можно было снять одной рукой. Не дотрагивайтесь руками до внутренних стенок контейнера и крышки.
4. Выпустите небольшое количество мочи в унитаз. Приостановите мочеиспускание.
5. Удерживая крайнюю плоть в отведенном положении, направьте струю мочи в контейнер и наполните его до половины объема, при этом старайтесь не касаться краев контейнера.
6. Тщательно закройте контейнер крышкой и промаркируйте.

Правила сбора мочи для женщин

1. Проведите туалет наружных половых органов.
2. Снимите крышку с контейнера и возьмите его в руку, стараясь не касаться краев. Соберите мочу (примерно треть объема контейнера). Постарайтесь не прикасаться контейнером к телу.
3. Во избежание попадания в мочу выделений из влагалища, во время сбора мочи женщинам, живущим половой жизнью, рекомендуется ввести во влагалище тампон.

Правила сбора спермы

1. Перед сбором материала тщательно вымойте руки с мылом, а затем проведите туалет наружных половых органов. Головку полового члена и крайнюю плоть высушите стерильной салфеткой.
2. Подготовьте контейнер, крышку контейнера приоткройте так, чтобы ее можно было снять одной рукой. Не дотрагивайтесь руками до внутренних стенок контейнера и крышки.
3. Материал собирают в стерильный контейнер. Обратите внимание на то, чтобы крышка на контейнере была хорошо закрыта во избежание вытекания материала.
4. Условия хранения материала: при комнатной температуре — 6 часов, при температуре 2-8 0 С — в течении 1 суток.

Правила сбора кала

1. Материал (кал) на выявление микроорганизма собирается до начала лечения антибактериальными и химиотерапевтическими препаратами.
2. Для исследования собирают свежевыделенный кал.
3. За 3-4 дня до исследования отменить прием слабительных препаратов, касторового и вазелинового масла и прекратить введение ректальных свечей.
4. Кал, полученный после клизмы, а также после приема бария (при рентгеновском обследовании) для исследования непригоден.
5. Кал собирается в чистый, одноразовый контейнер с завинчивающейся крышкой и ложечкой в количестве не более половины объема ложечки (вишневая косточка).
6. Материал доставляется в лабораторию в течение 3 часов с момента сбора анализа. Желательно в течение указанного времени материал хранить в холоде ( +4 0 С ).

Условия, соблюдение которых обязательно:

• не допускается замораживание;
• не допускается длительное хранение (более 5-6 часов);
• не пригодны никакие транспортные контейнеры, кроме указанных;
• не допускается хранение в неплотно закрытом контейнере;

Правила сбора грудного молока

1. Перед сцеживанием молока тщательно помойте руки и молочные железы с мылом, обработайте соски и околососковую область ватными тампонами, смоченными 70% спиртом (каждая железа обрабатывается отдельным тампоном).
2. Сцедите первые 5-10 мл в отдельную посуду (т.к. эта порция молока не пригодна для исследования), последующие 4-5 мл сцедите в стерильный контейнер, старайтесь при этом не касаться краев контейнера телом.
3. Молоко из каждой железы собирайте в отдельный контейнер, крышку необходимо плотно закрыть.

Правила взятия крови

1. Взятие крови следует проводить натощак или через 3 часа после приема пищи из локтевой вены одноразовой иглой в специальную выкуумную систему типа «Vacuett®».
2. После взятия крови пробирку следует плавно несколько раз перевернуть вверх дном, чтобы кровь в пробирке тщательно перемешалась с антикоагулянтом (в противном случае, кровь свернется, и выделение ДНКРНК станет невозможным!).
3. Пробирку промаркировать.

Показания:

— Оценка состояния влагалищной флоры.

— Выделение патологической флоры.

Оснащения:

— Г инекологическое кресло.

— Ложечка Фольтмана, предметное стекло.

2. Скажите женщине, что будет сделано и какого ожидать результата.

3. Наденьте на обе руки новые одноразовые пли стерильные (глубоко дезинфицированные), многоразовые перчатки (покажите женщине, что вы надели стерильные перчатки).

4. Обеспечьте освещение достаточное для осмотра шейки матки.

5. Приготовьте инструменты: гинекологические зеркала, ложечку Фолькмана. предметное стекло.

6. Обработайте кресло ветошью, смоченной 0,5% раствором гипохлорита кальция, и постелите чистую пеленку.

7. Уложите женщину на гинекологическое кресло.

8. Введите гинекологическое зеркало (см.2.2). Ложечкой Фолькмана или желобоватым ЗОНДОМ возьмите отделяемое из заднего свода, и нанеси на предметное стекло (вдоль).

9. Осторожно выведите из влагалища гинекологическое зеркало, опустите в 3% раствор хлорамина.

10. Снимите одноразовые перчатки, выбросите их, согласно показаниям, многоразовые перчатки снимите, выворачивая наизнанку, и погрузите в 3% раствор хлорамина.

11. Вымойте руки водой с мылом 11 Подпишите направление.

— ФИО.

— Место работы или учебы.

— Назначение мазка (мазок на степень чистоты).

— Подпись врача или акушерки.

— Отправьте мачок в лабораторию

Степень чистоты плагалишного содержимого.

Первая степень чистоты. Видны эпителиальные клетки (If и влагалищные палочки (2)

Вторая степень чистоты. Видны эпителиальные клетки (I) и влагалищные палочки (2) и единичные лейкоциты (St и comma variahile (4).

Третья степень чистоты. Влагалищных палочек меньше (2), много лейкоцитов (3), comma variahile (4) и кокков (5).

Четвертая степень чистоты. Влагалищные палочки исчезли. Много лейкоцитов (3). Многочисленные кокки (5), trichomonas vagina/is (6).

Не нашли то, что искали? Воспользуйтесь поиском:

Лучшие изречения: Да какие ж вы математики, если запаролиться нормально не можете. 8396 — | 7314 — или читать все.

91.146.8.87 © studopedia.ru Не является автором материалов, которые размещены. Но предоставляет возможность бесплатного использования. Есть нарушение авторского права? Напишите нам | Обратная связь.

Отключите adBlock!
и обновите страницу (F5)
очень нужно

Для диагностики причины заболеваний женской репродуктивной системы используется гинекологический мазок на флору. Это вид микробиологического исследования, с помощью которого выявляются условно-патогенные бактерии, часто являющиеся нормальным компонентом микробной флоры здоровой женщины, и абсолютные патогены, вызывающие венерические заболевания. Поэтому для правильной трактовки результатов необходимо обратиться к специалисту.

p, blockquote 1,0,0,0,0 —>

p, blockquote 2,0,0,0,0 —>

Показания к исследованию

p, blockquote 3,0,0,0,0 —>

Признаки воспаления и наличие инфекции – именно это показывает гинекологический мазок на флору. Поэтому его назначают при следующих жалобах пациентки:

p, blockquote 4,0,0,0,0 —>

• зуд в области промежности и влагалища (вульвы);
• слизистые или гнойные выделения из влагалища;
• неприятный запах выделений, например, рыбный.

Мазок на флору назначают и здоровым женщинам с целью раннего выявления инфекции:

p, blockquote 5,0,0,0,0 —>

• при ежегодном профилактическом осмотре;
• для контроля эффективности проведенной антимикробной терапии;
• перед гинекологическими процедурами и операциями, чтобы не допустить попадания инфекции в другие органы и кровь;
• при длительном приеме антибиотиков для исключения вагиноза и кандидоза влагалища;
• во время беременности.

При беременности мазок на флору берется трижды: при постановке женщины на учет в консультации, на 30-й неделе и на 36-й неделе. Это необходимо, чтобы исключить инфицирование ребенка во время родов, а также проникновение патогенных микробов в другие ткани.

p, blockquote 6,0,0,0,0 —>

p, blockquote 7,0,0,0,0 —>

Подготовка к исследованию

Мазок нельзя сдавать во время менструации. Оптимальный срок – середина цикла, с 10-го по 20-й день после начала месячных.

p, blockquote 8,0,0,0,0 —>

Подготовка к сдаче мазка на флору заключается в следующем:

p, blockquote 9,0,0,0,0 —>

• за 2 недели до исследования прекратить лечение антибиотиками или противогрибковыми средствами, если же это невозможно – предупредить врача во время взятия мазка;
• за 3 дня воздержаться от влагалищных сексуальных контактов;
• за 2 дня прекратить использование вагинальных суппозиториев, таблеток, кремов и других лекарственных форм для местного применения;
• накануне исследования не спринцеваться, можно только подмыть область промежности теплой водой с мылом.

p, blockquote 10,0,0,0,0 —>

Процедура взятия мазка

Мазок на флору у женщин берут из уретры, с внутренней части половых губ, слизистой оболочки влагалища и шейки матки. Также можно получить материал для микроскопии из полости матки (при аспирации или выскабливании) и яичников (путем пункции или во время операции). Из этого материала тоже готовятся мазки.

p, blockquote 11,0,0,0,0 —>

Забор гинекологического мазка на флору с шейки матки

Техника взятия мазка:

p, blockquote 12,0,1,0,0 —>

1. Уретра: используется очень тонкий тампон на алюминиевой проволоке или одноразовая бактериологическая петля. Область наружного отверстия мочеиспускательного канала очищают тампоном из марли. Петлю или тампон вводят в уретру на глубину 1-2 см, одновременно слегка надавливая на боковые и заднюю стенки. Полученный материал помещают на предметное стекло путем прокатывания тампона или передвижения петли. Он используется для микроскопии и иммунофлюоресцентного анализа. Чтобы провести культуральное исследование или полимеразную цепную реакцию (ПЦР) тампон или петлю помещают в пробирку с питательной средой.
2. Преддверие влагалища и половые губы: применяется стерильный тампон. Взятие материала проводится с воспаленного участка. При абсцессе желез преддверия его сначала вскрывают, а затем полученное содержимое переносят на предметное стекло.
3. Влагалище: с помощью зеркал обнажают нижнюю часть влагалища с шейкой. Тампон помещают на видимый участок воспаления или при его отсутствии – в задний свод влагалища. Материал равномерно переносят на предметное стекло, просушивают на воздухе, закрепляют этанолом (2-3 капли на стекло), маркируют, помещают в закрытую емкость и направляют в лабораторию. При необходимости культурального исследования, например, при трихомониазе, тампон помещают в пробирку и немедленно отправляют лаборанту.
4. Шейка матки: вначале с помощью ватного тампона берут материал для культурального исследования. Шейку смачивают стерильным физраствором, тампон осторожно вводят в цервикальный канал, а затем извлекают, не касаясь влагалищных стенок, и помещают в стерильную пробирку. Чтобы взять мазок для микроскопии, ПЦР или вирусологического анализа, используется особая щеточка. Ее помещают в цервикальный канал после забора материала на культуральное исследование. Глубина введения составляет 1-2 см, щеточку осторожно вращают, затем полученный соскоб переносят на предметное стекло.

Взятие мазков – быстрая, безболезненная и безопасная процедура.

p, blockquote 13,0,0,0,0 —>

p, blockquote 14,0,0,0,0 —>

Микроскопическое исследование

Микроскопия мазка дает возможность:

p, blockquote 15,0,0,0,0 —>

• предварительно определить, какие микроорганизмы и в каком количестве имеются в очаге заболевания;
• оценить, насколько правильно технически взят материал для анализа (например, в мазке из цервикального канала не должно быть клеток со стенки влагалища);
• выявить некоторые микроорганизмы, для культивирования которых нужны особые питательные среды – гонококк, трихомонада, анаэробы.

Даже при обычной микроскопии могут быть обнаружены строгие анаэробные бактерии. Они входят в состав здоровой микрофлоры, но при накоплении в большом количестве становятся причиной бактериального вагиноза. При этом в мазках выявляются фузобактерии, бактероиды, гарднереллы.

p, blockquote 16,0,0,0,0 —>

Факультативные анаэробы внешне схожи, а вот чувствительность к антибиотикам у них разная. Поэтому при выявлении таких микробов проводится дальнейшее культуральное исследование.

p, blockquote 17,0,0,0,0 —>

Таким образом, микроскопия мазка очень важна для диагностики бактериального вагиноза. Также с ее помощью выявляют цитолитический вагиноз и вагинальную эпителиальную атрофию, которая появляется у женщин после менопаузы.

p, blockquote 18,0,0,0,0 —>

Микроскопия мазка необходима для диагностики таких заболеваний:

В результате анализа врач получает данные о состоянии влагалищного эпителия, выраженности воспаления и составе микрофлоры.

p, blockquote 20,0,0,0,0 —>

p, blockquote 21,0,0,0,0 —>

Результаты микроскопического исследования

Для определения общей обсемененности микроорганизмами используются такие критерии:

p, blockquote 22,0,0,0,0 —>

• при обнаружении до 10 микробов в поле зрения – минимальная (+);
• 11-100 клеток – умеренная (++);
• 100-1000 клеток – большое количество (+++);
• более 1000 клеток – массивное количество (++++).

Также проводят качественный анализ, определяя, какие микроорганизмы видны в мазке. Для этого его окрашивают разными способами – по Граму или по Романовскому-Гимзе. В заключении врач отражает обнаруженные микроорганизмы и их количество.

p, blockquote 23,0,0,0,0 —>

Показатели нормы при исследовании микрофлоры влагалища:

p, blockquote 24,0,0,0,0 —>

• лактобактерии – до 10 7 — 10 9 КОЕ/мл;
• бифидобактерии – до 10 7 ;
• коринебактерии, стрептококки – до 10 5 ;
• клостридии, пропионибактерии, мобилункус, пептострептококки, стафилококки, кишечная палочка, бактероиды, превотеллы, кандида – до 10 4 ;
• порфиромонады, фузобактерии, вейлонеллы, уреаплазма, микоплазма – до 10 3 .

КОЕ – это колониеобразующая единица, то есть одна микробная клетка. При культивировании на питательной среде она будет размножаться и образует отдельную колонию.

p, blockquote 25,1,0,0,0 —>

Чувствительность световой микроскопии находится в пределах 10 4 -10 5 КОЕ/мл. Поэтому те бактерии, которые содержатся в отделяемом в меньшем количестве, могут быть не обнаружены, и это нормально.

p, blockquote 26,0,0,0,0 —>

p, blockquote 27,0,0,0,0 —>

Иногда расшифровка результатов не содержит подробного перечисления обнаруженных видов бактерий. В этом случае в бланке анализа можно увидеть термины:

p, blockquote 28,0,0,0,0 —>

• палочки (это нормальная микрофлора влагалища);
• кокки (бактерии округлой формы, нередко являющиеся причиной воспаления – стрептококк, стафилококк);
• смешанная флора (обычно встречается при бактериальном вагинозе).

Также в результате исследования могут быть указания на наличие большого количества плоского эпителия и лейкоцитов (показателей воспаления), а также слизи и «ключевых» клеток – эпителиоцитов, со всех сторон окруженных бактериями.

p, blockquote 29,0,0,0,0 —>

p, blockquote 30,0,0,0,0 —>

Определение степени чистоты

По результатам микроскопии врач делает заключение о так называемой степени чистоты влагалища. Выделяют 4 таких степени:

p, blockquote 31,0,0,0,0 —>

1. Очень редко встречается у женщин, ведущих половую жизнь

Определяется кислая среда, до 10 лейкоцитов и эпителиальных клеток, небольшое количество слизи. Микрофлора представлена лактобактериями, остальные микроорганизмы могут быть лишь единичными.

p, blockquote 32,0,0,0,0 —>

1. Норма, соответствует полному здоровью половых органов

В отличие от первой степени, среда отделяемого слабокислая, в небольшом количестве присутствуют грам-положительные кокки.

p, blockquote 33,0,0,0,0 —>

1. Признаки кольпита – воспаления стенок влагалища

Среда нейтральная, лейкоцитов и эпителия более 10 в поле зрения, умеренное количество слизи, «ключевые» клетки. Присутствуют патогенные микроорганизмы (грам-положительные и грам-отрицательные палочки, кокки), а количество лактобактерий меньше нормы.

p, blockquote 34,0,0,0,0 —>

1. Выраженное воспаление

Среда нейтральная или щелочная, лейкоцитов более 30, эпителий и слизь в большом количестве. Патогенные микроорганизмы в большом количестве, соответствующем разным степеням микробной обсемененности. Лактобактерии могут отсутствовать.

p, blockquote 35,0,0,0,0 —>

Норма лейкоцитов при беременности, а также другие показатели микробиологического исследования такие же, как и у небеременной женщины. Увеличение числа лейкоцитов, эпителия или появления патогенных микроорганизмов свидетельствует о развитии воспалительного процесса и требует лечения.

p, blockquote 36,0,0,0,0 —>

p, blockquote 37,0,0,1,0 —>

Культуральное исследование

При обнаружении в мазке на флору болезнетворных бактерий необходимо установить их вид и чувствительность к антибиотикам. Для этого используется культуральное исследование. Это основной метод распознавания гонореи, трихомониаза, хламидиоза.

p, blockquote 38,0,0,0,0 —>

Определение чувствительности к антибиотикам особенно важно при инфекциях, вызванных условно-патогенными микробами. Нужно учитывать, что иногда они находятся во влагалище в довольно малом количестве, и при обычной микроскопии не выделяются. Поэтому лишь культуральное исследование способно обнаружить такие микробы.

p, blockquote 39,0,0,0,0 —>

Для анализа полученный при взятии мазка материал помещают на специальную питательную среду и культивируют, то есть выдерживают в благоприятных условиях некоторое время. Бактерии при этом начинают размножаться, их количество увеличивается, и появляется возможность их идентифицировать. После определения ведущего возбудителя проводят анализ чувствительности его к антибактериальным препаратам. Поэтому анализ занимает довольно долгое время – до недели.

p, blockquote 40,0,0,0,0 —>

С помощью культурального исследования можно обнаружить патогенные грибы, кишечную палочку, стафилококки, стрептококки, коринебактерии, нейссерии, энтерококки и другие микробы и назначить правильное лечение инфекции.

p, blockquote 41,0,0,0,0 —>

p, blockquote 42,0,0,0,0 —>

Результаты мазка при некоторых патологических состояниях

p, blockquote 43,0,0,0,0 —>

Расшифровку результата лучше доверить специалисту. Однако женщина имеет право и самостоятельно определить, насколько благополучно состояние ее половой системы. Ниже приведены примеры наиболее часто встречающихся заключений при разных гинекологических заболеваниях.

p, blockquote 44,0,0,0,0 —>

Бактериальный вагиноз:

p, blockquote 45,0,0,0,0 —>

• есть клетки поверхностного эпителия, часто имеются «ключевые» клетки;
• лейкоциты в норме;
• общее количество микробов – большое или массивное (10 9 КОЕ/мл или 9 lg КОЕ/мл);
• преобладают гарднереллы и анаэробы, лактобактерии отсутствуют (менее 10 5 КОЕ/мл);
• при культивировании в присутствии воздуха роста микроорганизмов нет, или имеется условно-патогенная флора в небольшом количестве, так как анаэробы на воздухе погибают.

Кандидозный вагинит:

p, blockquote 46,0,0,0,0 —>

• эпителий не только поверхностный, но и из промежуточных и даже глубоких слоев в зависимости от тяжести поражения;
• лейкоциты от 10 до 50 и более в поле зрения;
• общее число микробов не более 10 8 КОЕ/мл, из них лактобактерий более 10 6 КОЕ/мл;
• определяются дрожжевые грибы в количестве более 10 4 КОЕ/мл;
• если грибы найдены в количестве менее 10 4 КОЕ/мл – это бессимптомное носительство кандидоза.

При сочетании кандидоза и вагиноза отмечаются изменения одновременно обоих типов, но лактобактерии замещаются гарднереллами и анаэробами.

p, blockquote 47,0,0,0,0 —>

Неспецифический вагинит:

p, blockquote 48,0,0,0,0 —>

• имеется поверхностный и промежуточный, реже парабазальный эпителий в большом количестве;
• лейкоциты более 10 в поле зрения;
• общее число микробов умеренное;
• преобладают кишечная палочка или грам-положительные кокки;
• лактобактерии отсутствуют или единичные.

Вагинальная эпителиальная атрофия (норма у пожилых женщин):

p, blockquote 49,0,0,0,0 —>

• эпителий промежуточный и парабазальный, то есть поверхностные клетки исчезают;
• лейкоцитов до 10 в поле зрения;
• микроорганизмы, в том числе и лактобактерии, не определяются, или их количество крайне низкое (до 10 4 КОЕ/мл).

p, blockquote 50,0,0,0,1 —>

При специфических вагинитах, вызванных половыми инфекциями, в мазке обнаруживают трихомонады, хламидии, гонококки и другие подобные возбудители. В остальном картина будет соответствовать неспецифическому вагиниту.